Slam 表達與定位：Slam 主要定位于細胞膜表面，表達量達 1.2×10?分子 / 細胞（流式細胞術定量），較親本細胞高 20 倍以上，且呈均一性表達（變異系數＜8%），為病毒感染提供均一的受體環境。

病毒敏感性：對麻疹病毒的感染效率達 98%（免疫熒光檢測核蛋白 NP），感染后 48 小時病毒滴度達 10?-10? PFU/mL，較 Vero 細胞高 2-3 個數量級；對犬瘟熱病毒、小反芻獸疫病毒等其他副黏病毒也具有廣譜敏感性，滴度提升 1-2 個數量級。

生物安全性：無致瘤性（裸鼠接種實驗陰性），外源病毒與支原體檢測均為陰性，符合人用疫苗生產的細胞基質要求。

病毒分離與分型：作為麻疹病毒分離的 “金標準" 改造細胞系，臨床樣本接種后分離效率達 96%，較傳統 Vero 細胞高 40%，可通過蝕斑形態差異區分疫苗株與野毒株（疫苗株蝕斑較小且邊緣規則）。其分離的病毒株經全基因組測序驗證，遺傳一致性達 99.5%，為麻疹病毒基因型監測提供標準化毒株。

減毒活疫苗生產：因病毒產量高且安全性可靠，已用于麻疹減毒活疫苗的工業化生產。在微載體培養系統中，麻疹病毒滴度達 5×10? PFU/mL，單批次 500L 反應器可生產 500 萬劑疫苗，批間差異＜5%，疫苗中殘留宿主細胞 DNA＜10pg / 劑，符合 WHO 規定的生物制品標準。

跨物種病毒研究：對犬瘟熱病毒（CDV）的敏感性顯著提升，感染后可觀察到典型細胞病變（多核合胞體形成），為 CDV 的跨物種傳播機制研究提供模型。例如，通過比較不同動物源 Slam 受體在該細胞中的表達差異，揭示了 CDV 從犬向熊貓傳播的受體適應性突變。

快速診斷應用：可用于副黏病毒感染的病原學診斷，將臨床樣本接種后 48 小時內通過免疫熒光檢測病毒抗原，診斷符合率達 92%，較傳統 RT-PCR 方法縮短檢測時間 24 小時，為疫情快速響應提供技術支持。

藥物活性評估：基于其高病毒產量，可構建高通量藥物篩選模型。例如，通過檢測融合抑制劑對麻疹病毒包膜與細胞膜融合的阻斷效果，測定其 EC??=0.8μM，與動物實驗結果一致性達 0.93，為抗麻疹病du藥物研發提供可靠數據。

病毒入侵機制解析：利用該細胞系研究麻疹病毒與 Slam 的相互作用，已鑒定出 Slam 的 D1 結構域是病毒結合的關鍵位點，為靶向受體的抗病du藥物設計提供分子靶點。

培養基：DMEM 高糖培養基添加 10% 胎牛血清，pH 維持在 7.2-7.4，可加入非必需氨基酸提升細胞活力。

傳代流程：當細胞融合度達 80%-90% 時，棄舊培養基，PBS 洗滌 2 次，加入細胞解離液，37℃孵育 3-5 分鐘至細胞脫落，加入含血清的培養基終止消化，按 1:4 比例接種至新培養瓶，避免過度融合導致 Slam 表達下調。

凍存保護：取對數生長期細胞，用含 10% DMSO 的wan全培養基重懸至密度 1×10?個 /mL，程序降溫后液氮保存，復蘇后傳代 2 次再用于病毒實驗（確保受體表達穩定）。

麻疹病毒接種：細胞以 2×10?個 / 孔接種 24 孔板，培養 24 小時至融合度 70%，用無血清培養基稀釋病毒（MOI=0.01），37℃吸附 1 小時，換含 2% 血清的維持液，72 小時后通過蝕斑實驗測定病毒滴度，或通過免疫熒光檢測 NP 蛋白評估感染效率。

藥物篩選操作：感染前 1 小時加入待篩藥物，感染后繼續培養 48 小時，通過 CCK-8 檢測細胞活力（排除毒性），同時檢測病毒產量，計算藥物抑制率與選擇指數（SI=CC??/EC??）。

優勢：

局限性：