ACE2 表達與定位：ACE2 主要定位于細胞膜表面，表達量達 1.5×10?分子 / 細胞（流式細胞術定量），較親本細胞高 20 倍以上，且呈均一性表達（變異系數＜6%），為病毒感染提供均一的受體環境。

病毒敏感性：對 SARS-CoV-2 的感染效率達 98%（免疫熒光檢測核蛋白 N），感染后 48 小時病毒滴度達 10?-10? TCID??/mL，較 VERO-E6 細胞高 2-3 個數量級；對 SARS-CoV、HCoV-229E 等其他冠狀病毒也具有廣譜敏感性，滴度提升 1-2 個數量級。

生物安全性：無致瘤性（裸鼠接種實驗陰性），外源病毒與支原體檢測均為陰性，符合人用疫苗生產的細胞基質要求。

病毒受體結合研究：利用 VERO-E6-ACE2 + 的高表達特性，可精準解析冠狀病毒 S 蛋白與 ACE2 的相互作用。例如，通過表面等離子體共振技術，測定 SARS-CoV-2 S 蛋白受體結合域（RBD）與 ACE2 的結合親和力（KD=15nM），較親本細胞測定結果更穩定（變異系數＜3%），為突變株的親和力變化研究提供基準數據。

入侵途徑解析：該細胞系可用于驗證病毒入侵的輔助因子，如 TMPRSS2 的作用。通過共表達 ACE2 與 TMPRSS2，發現病毒感染效率進一步提升 50%，證實 TMPRSS2 介導的 S 蛋白切割是病毒入侵的關鍵步驟，為靶向入侵過程的藥物設計提供分子靶點。

疫苗株篩選：因病毒產量高，可快速評估疫苗株的復制能力與免疫原性。例如，在該細胞系中篩選的 SARS-CoV-2 減毒株，病毒滴度達 10?.? TCID??/mL，且在動物實驗中顯示出良好的免疫原性（中和抗體效價達 1:1024），為減毒活疫苗開發提供候選株。

滅活疫苗生產：已用于 SARS-CoV-2 滅活疫苗的工業化生產研究。在微載體培養系統中，病毒滴度達 5×10? TCID??/mL，單批次 500L 反應器可生產 500 萬劑疫苗，批間差異＜5%，疫苗中殘留宿主細胞 DNA＜10pg / 劑，符合 WHO 規定的生物制品標準。

受體阻斷劑篩選：基于其高 ACE2 表達，可構建受體阻斷劑的高通量篩選模型。例如，通過檢測化合物對 S 蛋白與 ACE2 結合的阻斷效果，發現某天然產物衍生物的 IC??=0.5μM，且對細胞毒性低（CC??＞50μM），后續實驗證實其可在動物模型中降低病毒載量 100 倍以上，為抗冠狀病du藥物研發提供先導化合物。

藥物作用機制驗證：可區分藥物的作用靶點（病毒或宿主）。例如，某化合物在 VERO-E6-ACE2 + 細胞中對 SARS-CoV-2 的抑制率達 90%，而在 ACE2 低表達細胞中抑制率僅 30%，證實其作用機制為阻斷 ACE2 與 S 蛋白結合，而非直接抑制病毒復制。

培養基：DMEM 高糖培養基添加 10% 胎牛血清、非必需氨基酸，pH 維持在 7.2-7.4，可加入抗生素混合液預防污染。

傳代流程：當細胞融合度達 80%-90% 時，棄舊培養基，PBS 洗滌 2 次，加入細胞解離液，37℃孵育 3-5 分鐘至細胞脫落，加入含血清的培養基終止消化，按 1:4 比例接種至新培養瓶，避免過度融合導致 ACE2 表達下調。

凍存保護：取對數生長期細胞，用含 10% DMSO 的wan全培養基重懸至密度 1×10?個 /mL，程序降溫后液氮保存，復蘇后傳代 2 次再用于病毒實驗（確保受體表達穩定）。

冠狀病毒接種：細胞以 2×10?個 / 孔接種 24 孔板，培養 24 小時至融合度 70%，用無血清培養基稀釋病毒（MOI=0.01），37℃吸附 1 小時，換含 2% 血清的維持液，72 小時后通過蝕斑實驗測定病毒滴度，或通過免疫熒光檢測 N 蛋白評估感染效率。

藥物篩選操作：感染前 1 小時加入待篩藥物，感染后繼續培養 48 小時，通過細胞活力檢測排除毒性，同時檢測病毒產量，計算藥物抑制率與選擇指數。

優勢：

局限性：